Produit Uranyless Aqueux

Uranyless Aqueux

Uranyless Aqueux

UranyLess Aqueous est une solution de contraste qui remplace l’acétate d’uranyle. Comme recommandé par Reynolds (1963), il est fortement conseillé de renforcer le contraste initial (dans notre cas, UranyLess) avec du citrate de plomb dans une atmosphère saturée en NaOH afin d’éviter toute contamination par le CO₂ atmosphérique.

Pour faciliter l’utilisation du citrate de plomb lors du contraste, il est conditionné dans des flacons AirLess (sans air et donc sans CO₂). Vous pouvez conserver ce flacon de 30 ml pendant une longue période sans risque de contamination au CO₂, un problème fréquent pour les microscopistes.

L’emballage en flacon AirLess de 30 ml permet de contraster plus de 1500 grilles.

Cet emballage est doublement efficace : il offre une longue durée de conservation et génère un minimum de déchets.

Pour l’utilisation de UranyLess Aqueous dans des dispositifs de contraste automatisés comme le EM Stain de Leica, UranyLess est disponible en flacon de 200 ml. Il convient de noter que UranyLess Aqueous est conditionné dans un flacon AirLess pour faciliter la distribution en gouttes uniquement, car il n’est pas affecté par l’air ni par la lumière.

Uranyless aqueous bottle

Découvrez nos résultats !

Yeast

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation standard avec glutaraldéhyde – osmium – inclusion dans l’Epon.
  • Contraste avec UranyLess, suivi de citrate de plomb.

Voici quelques résultats présentés par Jeannine Lherminier (INRA – Dijon).

Photographies réalisées à l’aide de la microscopie électronique en transmission.

Trematodes

Nous présentons quelques résultats de Yann Quilichini (Plateforme de microscopie de l’Université de Corse – Corte).

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation standard avec glutaraldéhyde, osmium, et inclusion dans la résine de Spurr.
  • Coupes ultrafines – contraste avec UranyLess Aqueous, suivi de citrate de plomb (selon Reynolds).

Photographies réalisées à l’aide de la microscopie électronique en transmission.

Polymersomes (Polymere)

Le laboratoire IMRCP de Toulouse, dirigé par Anne-Françoise Mingotaud, a testé UranyLess en comparaison avec l’acétate d’uranyle, qui a un pH acide de 4 (semblant perturber l’organisation de la structure moléculaire). Ils ont également comparé les observations réalisées à l’aide de la Cryo-SEM (microscopie électronique à balayage).

La structure chimique est organisée comme suit :

Observation par microscopie électronique à balayage en mode cryo et par coloration négative avec UranyLess.

Épiderme Reconstruit (humain)

Nous présentons les résultats d’Audrey Houcine (CMEAB Toulouse).

Preparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation standard avec glutaraldéhyde, osmium, Epon/Araldite.
  • Coupe ultra-fine, double contraste avec Uranyless suivi de citrate de plomb.

Photographies réalisées avec le microscope électronique en transmission Hitachi HT7700 par Audrey Houcine.

Muscle-Nerf (souris)

Preparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation standard avec glutaraldéhyde, osmium, Epon.
  • Coupe ultra-fine, double contraste avec Uranyless (1 min) suivi de citrate de plomb (1 min).
Delta-muscle-cellules-23-953x1024 (1)
Coupe longitudinale du muscle squelettique de souris – Coupe du nerf (zone dense, gaine de myéline).
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
Delta-muscle00-1024x985 (1)
Vue détaillée des myocytes.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
Delta-muscle-squelettique-ct-3-1024x842
Coupe transversale des fibres musculaires – Mitochondries.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
Delta-muscle-squelettique-ct-4-1024x1003
Myocyte.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).

Follicule Ovarien (souris).

Preparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation standard avec glutaraldéhyde, fixateur PFA, osmium, Epon.
  • Votre phrase est déjà correcte et bien formulée en français :
    Coupe ultra-fine, double contraste avec Uranyless (1 min) suivi de citrate de plomb (1 min).
theque-interne
Thèque interne du follicule ovarien de souris.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
theque-interne-2
Mitochondries dans les cellules typiques en forme de gant de doigt impliquées dans la synthèse des stéroïdes (thèque interne du follicule ovarien).
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
Delta-cellule-folliculaire
Cellule folliculaire de la corona radiata d'un follicule ovarien de souris.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
theque-externe1 (1)
Cellule de la thèque externe du follicule ovarien de souris.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).

Rein (souris)

Rein (souris)

Preparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation classique avec PFA – Glutaraldéhyde, Osmium, Epon.
  • Coupe ultra-fine – Contraste avec UranyLess (1 min) – Citrate de plomb (1 min).

Photos prises avec un microscope électronique en transmission Hitachi HT7700 par Nacer BENMERADI (R&D – Delta Microscopies – France).

Delta-rein4-1024x1014
Glomerular Zone – podocytes – stalks – Kidney.. Photo: Nacer Benmeradi (R&D- DeltaMicroscopies-France)
Delta-rein31-1024x946
Podocytes – stalks – Kidney. Photo: Nacer Benmeradi (R&D- DeltaMicroscopies-France)
Delta-Rein3-1024x1010
Rein de souris.
Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
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Invaginations basales – hémi-desmosomes – lame basale : augmentation de la surface d'échange – Rein.
Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).

Muscle cardiaque - (souris)

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation classique avec glutaraldéhyde, osmium, Epon – Coupe ultra-fine.
  • Coupes, double contraste avec Uranyless et citrate de plomb.
Image1-926x1024
Muscle cardiaque de souris.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
Muscle-cardiaque-souris-2-927x1024
Muscle cardiaque de souris.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
Image2-926x1024
Muscle cardiaque de souris.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).

Tissue de plante

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation classique avec glutaraldéhyde, osmium, inclusion en Epon.
  • Double contraste avec Uranyless et citrate de plomb.
feuille-1-lherminier
Feuille de plante.
Photo : Jeannine Lherminier.
feuille-2-lherminier
Feuille de plante.
Photo : Jeannine Lherminier.

Phage T6

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Étalement du phage T6 sur une grille G300-Cu recouverte d’un film de formvar.
    Ionisation de la grille : 1 min pour l’étalement de l’échantillon.
  • Toutes les photos : Nacer Benmeradi, PhD, Responsable R&D, Laboratoire Delta Microscopies, France.
negative staining phage t6
phage T6
mouse kidnay negative staining
phage T6.
phage-T6-2 (1)
Phage T6
phage T6 negative staining
Page T6

Coupe transversale de bactérie (E. coli)

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant : Coupe transversale de bactérie.

  • Fixation classique avec glutaraldéhyde, osmium, Epon.
  • Coupe ultra-fine, double contraste avec Uranyless et citrate de plomb.
C.-Longin
Coupe transversale de bactérie.
Photo : Christine Longin (INRA, Jouy-en-Josas, France).
C.-Longin-1
Bactérie.
Photo : Christine Longin (INRA, Jouy-en-Josas, France).

Bacterie E-coli

  • Coloration négative pendant 2 minutes avec Uranyless pour les bactéries telles que E. coli (adhérentes et invasives (ACSI) LF82) possédant des pili et des flagelles.
bacterie negative staining
Invaginations basales, hémi-desmosomes et lame basale : augmentation de la surface d'échange dans le rein.
Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).

Sacculina crustacé (Intestin)

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant : Sacculina (petit crustacé parasite).

  • Fixation classique avec glutaraldéhyde, osmium, inclusion en Epon.
  • Coupes fines – Contraste à l’Uranyless aqueux à 60°C sur une plaque chauffante, sans post-coloration au citrate de plomb.
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Zone de la cuticule de Sacculina.
Photo : Dedjat Chakib (Muséum National d'Histoire Naturelle, Paris).

Intestine

  • Fixation classique avec glutaraldéhyde, osmium, inclusion en Epon.
  • Coupe ultra-fine – Contraste avec Uranyless et citrate de plomb.
intestin-2
Invaginations basales, hémi-desmosomes et lame basale : augmentation de la surface d'échange dans le rein.
Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).

Foie de souris et glande surrénale

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant : Foie de souris et gerbille du Sahara.

  • Fixation classique au glutaraldéhyde, osmium et inclusion en Epon.
  • Coupe ultra-fine, double contraste avec Uranyless et citrate de plomb.
kidney observation in electronic microscopy
Hépatocyte – Région périnucléaire.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).

Glande surrénale de gerbille du Sahara

  • Fixation classique avec glutaraldéhyde, osmium et inclusion dans de l’Epon.
  • Coupe ultra-fine, double contraste avec Uranyless et citrate de plomb.
cortico-surrénale-6
Glande cortico-surrénale.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).
cortico-surrénale2
Adrénocorticulaire.
Photo : Nacer Benmeradi (R&D - Deltamicroscopies, France).

Cellules en culture HeLa

Préparation de l’échantillon selon le protocole suivant :

  • Fixation classique avec PFA – Glutaraldéhyde, Osmium, Epon.
  • Coupe ultra-fine – Contraste avec UranyLess – Citrate de plomb.

Photos prises avec un microscope électronique en transmission Hitachi HT7700 par Nacer BENMERADI (R&D – Delta Microscopies – France).

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